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Technical articles罗氏LightCycler® 480 实时荧光定量PCR系统是实验室中常用的一款中高通量qPCR平台。以下是其标准的使用步骤流程,适用于绝大多数使用SYBR Green或TaqMan探针进行核酸扩增和定量分析的场景:
核酸提取
提取DNA或RNA(如为RNA需进行反转录获得cDNA)
评估浓度与纯度(建议A260/A280介于1.8–2.0)
试剂准备
根据实验方案选择合适的qPCR试剂(如SYBR Green I Master、Probe Master)
准备引物/探针工作液,确保无气泡、低温避光保存
标准反应体系(以20 µL体积为例):
成分 | 体积(µL) |
---|---|
Master Mix | 10 |
Forward Primer (10 µM) | 0.4 |
Reverse Primer (10 µM) | 0.4 |
探针/染料(如适用) | 0.2 |
模板DNA/cDNA | 1–2 |
无RNAse水 | 补足至20 µL |
注意:
所有反应成分应在冰上配置;
引物浓度通常在0.2–0.5 µM之间;
若使用多重qPCR,请确保荧光通道互不干扰。
将反应混合液分装至96孔或384孔反应板中;
使用专用光学封板膜密封反应板;
轻压封膜并离心去除气泡(例如2000 rpm × 30秒);
插入LightCycler® 480中指定托架位置。
在LightCycler® 480 Software中设置PCR程序,以下为常用的SYBR Green法设定模板:
预变性:95°C, 10 min
循环阶段(40–45 cycles):
变性:95°C, 10 sec
退火:60°C, 20 sec(具体温度依引物而定)
延伸:72°C, 20 sec(有时与退火合并)
熔解曲线分析(如用SYBR Green):
95°C, 5 sec
65°C–95°C逐步升温,每步0.5°C,采集荧光
荧光采集通道:根据染料选择通道(如FAM通道用于SYBR或FAM-TaqMan探针)
确认热盖温度(一般为105°C);
启动程序运行,期间可实时观察扩增曲线;
运行时间约为1.5–2小时(视程序设定而定);
扩增曲线查看:确认每孔反应特征,是否存在拖尾、背景信号;
Ct值判读:导出或自动生成Ct结果表;
熔解曲线分析(SYBR Green):判断特异性与是否出现非特异扩增;
标准曲线法(如绝对定量):生成曲线并计算拷贝数;
表达量分析(如相对定量):使用ΔΔCt法比较表达差异;
可导出 .xls
, .pdf
, .xml
等格式结果;
保存完整项目用于追溯和后续分析;
建议同时备份至本地和实验室服务器。
每次使用后清理反应板托盘;
定期进行光路校准与温控验证;
每月检查热盖压力与荧光通道响应;
若长期不使用,建议进行关机保护处理。