罗氏实时荧光定量PCR仪(qPCR)原理
实时荧光定量PCR(Real-Time Quantitative PCR, qPCR)是传统PCR技术与荧光探针检测技术的结合。
PCR扩增:通过热循环(变性—退火—延伸),指数式扩增目标DNA片段。
荧光检测:在扩增过程中引入荧光染料或特异性探针,扩增产物的增加会导致荧光信号同步增强。
实时监测:罗氏 qPCR 仪配备高灵敏度光学检测系统,可在每个循环结束后实时记录荧光信号变化,从而实现扩增动态的全程追踪。
这样,研究人员不再依赖末端产物(如电泳),而是通过曲线直接得到定量和定性信息。
罗氏 LightCycler 系列支持多种荧光检测方式,主要包括:
非特异性染料法(如 SYBR Green)
染料仅在与双链DNA结合时发出荧光。
随着PCR产物增加,荧光信号增强。
适合基因表达分析,但可能受引物二聚体或非特异性扩增干扰。
特异性探针法(如 TaqMan 探针、FRET 探针)
TaqMan 探针:在5’端带荧光基团,3’端带淬灭基团。探针与模板结合后,在延伸过程中被Taq酶切割,释放荧光。
FRET(荧光共振能量转移):通过两种染料之间的能量转移来检测产物。
特异性强,适合病原体检测、突变识别等临床应用。
Ct值(Threshold Cycle):荧光信号达到阈值时的循环数。
Ct值与初始模板拷贝数呈负相关,模板越多,Ct越小。
绝对定量:利用已知浓度的标准品绘制标准曲线,计算未知样本拷贝数。
相对定量:与内参基因比较(ΔΔCt法),得到目标基因的相对表达量。
罗氏仪器还可通过 熔解曲线分析(Melting Curve Analysis) 来验证扩增产物特异性:
缓慢升温,监测双链DNA解链时的荧光下降。
不同片段的熔解温度(Tm)不同,可区分目标片段与非特异性产物。
应用于基因分型、突变检测和非特异性扩增排查。
高精度温控:银块温控系统确保反应孔间温度差异极小,提高结果可重复性。
光学系统优化:多通道检测,避免荧光串扰,可同时检测多种探针。
实时曲线直观展示:用户可实时监控扩增曲线和熔解曲线,快速判断实验质量。
✅ 总结:
罗氏实时荧光定量PCR仪的核心原理是 将PCR扩增与荧光探针检测结合,通过在每个循环实时采集荧光信号,实现 核酸的定性、定量及特异性分析。其关键技术包括 Ct值定量分析 与 熔解曲线特异性验证,使其广泛应用于 基因表达研究、病原体检测、遗传学研究及临床诊断。