伯乐(Bio-Rad)Gene Pulser Xcell 电穿孔系统(包括1652660型号) 的快速操作指导,适用于日常基因转染实验。此流程为标准化操作简要,帮助用户快速、高效、安全地完成一次完整的电穿孔实验:
检查组件连接
确保主机、CE 模块(用于指数波)或 PC 模块(用于方波)已正确连接;
ShockPod 电击槽已插入主机并就位;
电源线连接稳固,打开主电源开关。
预热细胞与缓冲液
使用专用电穿孔缓冲液(如 Bio-Rad Gene Pulser Buffer);
细胞应处于对数生长期,低钙无血清状态最佳;
样品温度控制在冰上或4℃,电穿孔后立即恢复至37℃。
混合样品
合适浓度的细胞(约1×10⁶);
质粒DNA或RNA(通常为0.1–10 µg);
缓冲液补足至合适体积(10–500 µL,依据电击杯大小)。
在1.5 mL无酶管中加入:
去除气泡
轻轻弹击比色皿或使用微量离心,确保无气泡;
将混合液转移至电击杯中(0.2 cm / 0.4 cm 电极间距视细胞类型选择)。
选择波形模式
真核细胞:选择 指数波(Exponential Decay);
原核细胞(细菌、酵母):选择 方波(Square Wave)。
设定参数(参考值)
电压:1,800–2,500 V(0.2 cm 杯);
脉冲时间:5 ms;
重复次数:1–2 次。
电压:250–300 V(0.4 cm 杯);
电容:250 µF;
电阻:∞;
哺乳动物细胞(指数波):
细菌(方波):
保存设置(可选)
使用界面保存为自定义 protocol,便于重复实验调用。
插入电击杯
将装有样品的比色皿放入 ShockPod 中;
关闭盖子或压紧槽位确保安全接触。
按下【Pulse】键
系统释放脉冲;
屏幕将显示电压、脉冲时间与电阻结果;
若出现电弧,需重新准备样品并检查液面。
立即移出样品
将细胞从比色皿转移至温热的培养液中进行恢复(如添加预热DMEM + FBS);
静置 5–10 分钟后可接种入培养皿或离心收集继续实验。
取出比色皿,清洗干燥备用;
关闭主机电源,断开电源插头;
清洁 ShockPod 电击槽(干布擦拭);
如长时间不使用,请覆盖防尘罩保存设备。
问题 | 可能原因与建议解决方法 |
---|---|
电弧(Arc) | 比色皿中有气泡、液面过高、离子强度太高 |
脉冲时间异常短 | 设置不当、细胞浓度过高、电阻太低 |
转染效率低 | 缓冲液不兼容、DNA质量不高、电压过低 |
细胞死亡率高 | 电压过高、电容过大、处理液未冷却 |
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