在 ELISA 实验及其他基于微孔板的检测中,洗涤步骤对实验结果的准确性具有决定性作用。赛默飞 Wellwash 1x12 洗板机通过自动化操作提升了洗涤效率和一致性,而正确使用清洗试剂则是保障实验成功的关键。不同类型的试剂在洗板过程中承担着去除未结合物、降低背景、保持目标分子稳定的作用。因此,实验人员必须系统掌握试剂的选择、配制与使用方法,才能在实际应用中得到最佳效果。
PBS(磷酸盐缓冲盐溶液):最常用的基础清洗液,维持孔内离子强度和 pH 稳定。
TBS(Tris 缓冲盐溶液):在部分实验中可替代 PBS,适合对磷酸敏感的体系。
PBS-T 或 TBS-T(含 Tween-20):常见浓度为 0.05% Tween-20,可减少非特异性结合,提高洗涤彻底性。
对于背景较高的体系,可以适度提高至 0.1%,但需避免损伤结合物。
低浓度 Triton X-100 或 NP-40:用于细胞相关实验,帮助去除细胞碎片。
乙醇或甲醇稀释液:在特殊检测中用于去除疏水性物质,但不常规使用。
用于管路冲洗和终末清洁,避免残留盐分结晶。
PBS 配方:NaCl、KCl、Na2HPO4、KH2PO4,pH 7.2-7.4。
TBS 配方:Tris、NaCl,pH 7.4-8.0。
Tween-20 应先用少量缓冲液稀释再加入母液,避免直接倒入引起漂浮泡沫。
建议现配现用,如需长期存放,应低温保存,避免微生物污染。
对于敏感实验,配制完成后可通过 0.22 μm 滤膜过滤,去除颗粒和微生物。
并非所有实验都需灭菌,但至少保证试剂无可见悬浮物。
确认试剂透明无沉淀,若发现结晶,应重新配制。
检查 pH 是否符合要求,不合适的缓冲液可能影响抗原抗体结合。
清洗瓶应清洁干净,避免残留旧液。
装液量应根据实验数量计算,避免过多浪费。
新换试剂后应运行“Prime”或排气程序,让试剂充满管路,避免空气泡干扰喷液。
可先用去离子水冲洗一遍,再换成新配试剂。
进液速度:中等速度可兼顾洗涤彻底性与避免剧烈冲击。
浸泡时间:对于高背景实验,浸泡 30-60 秒可增强去除效果。
清洗次数:ELISA 常设为 3-5 次;若孔内残液多,可适度增加。
细胞相关实验应避免使用表面活性剂过高的洗液,以免破坏细胞层。
对于蛋白敏感实验,可用 PBS 替代含 Tween 的缓冲液,降低干扰。
洗涤废液中可能含有生物样品或化学物质,必须收集至废液瓶中,统一处理。
不可随意倾倒至下水道,应根据实验室生物安全规范分类处理。
配制和倾倒试剂时应佩戴手套和护目镜,避免接触皮肤或眼睛。
若不慎接触,应立即用大量清水冲洗。
检查试剂是否含有气泡,重新排气。
检查液体粘度是否过高,若必要可适度稀释。
试剂未过滤可能带入颗粒,应定期用去离子水冲洗管路。
若堵塞严重,可拆下针头进行清洁。
检查吸液针高度设置,必要时校准。
增加吸液延时,确保液滴完全被吸出。
试剂浓度不当或洗涤不彻底,需调整 Tween-20 浓度或增加清洗次数。
检查试剂是否受污染,必要时重新配制。
ELISA 常规选择 PBS-T;若背景高,可改用 TBS-T。
针对某些特殊抗体,需根据说明书指定缓冲液。
Tween-20 过低洗不净,过高可能破坏结合,建议逐步优化。
可在预实验中设置不同浓度梯度,比较信号强弱和背景水平。
长期大量实验建议集中配制母液,按需稀释使用,保证一致性。
建立配制与使用记录,便于追踪异常结果原因。
实验结束后用去离子水冲洗管路,避免试剂残留结晶。
废液瓶清洗干净,防止细菌滋生。
每周至少一次用 70% 酒精清洗管路,防止生物污染。
每月检查过滤装置,避免试剂杂质进入。
长时间停机时,应排空所有试剂,用去离子水冲洗干净。
最后注入少量无害保存液,防止管路干裂。
ELISA 背景过高:将 PBS-T 调整为 TBS-T 并延长浸泡时间,背景下降明显。
细胞洗板损伤严重:将含 Tween-20 的洗液换为 PBS,降低冲刷强度,细胞层保持完整。
管路结晶堵塞:发现是因 PBS 蒸发后盐析,改用去离子水冲洗收尾,堵塞问题明显减少。
批量实验效率提升:提前配好工作液,集中清洗多板,减少试剂更换次数,提高效率。
赛默飞 Wellwash 1x12 洗板机的高效运行不仅依赖于机械性能,更取决于试剂的科学使用。掌握试剂的选择、配制、浓度调整和日常维护方法,可以显著提升实验数据的准确性和可重复性。通过合理规划洗涤方案、科学处理废液、结合设备保养,实验人员能够在 ELISA 和其他检测工作中获得稳定可靠的结果。
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