赛默飞 NanoDrop Eight 分光光度计是一款多通道微量紫外-可见光检测仪器,广泛用于高通量样本定量,特别是在分子生物学、基因组学、蛋白质组学、临床研究以及生物技术行业中。与传统比色皿检测相比,NanoDrop Eight 采用微量检测平台技术,仅需 1–2 µL 样品 即可完成核酸、蛋白质、寡核苷酸以及其他生物分子的定量和纯度分析。
为了确保实验结果的准确性和可重复性,研究者必须严格遵循样本制备和检测的相关要求。本文将系统总结 NanoDrop Eight 在使用过程中对样本的要求,包括样本体积、浓度、纯度以及不同实验场景下的特定注意事项。
NanoDrop Eight 支持多种生物样本的光度检测,主要包括:
核酸样本
DNA(基因组 DNA、质粒 DNA、PCR 产物等)
RNA(总 RNA、mRNA、tRNA 等)
寡核苷酸(合成引物、探针等)
蛋白质样本
纯化蛋白
细胞裂解液中的粗提蛋白
常见蛋白浓度测定方法包括紫外吸收法(A280)和染料结合法(Bradford、BCA 等)。
其他样本
细胞或病毒裂解液
多肽溶液
一些特定的小分子化合物(只要在紫外-可见区有吸收峰)。
每个检测通道只需 1–2 µL 样品。
过量样品可能造成浪费,而不足会导致检测失败。
NanoDrop Eight 的线性检测范围较宽,但不同样本类型有所区别:
双链 DNA:2–15,000 ng/µL
RNA:2–5,000 ng/µL
寡核苷酸:2–5,000 ng/µL
蛋白质(A280 法):0.1–100 mg/mL
蛋白质(染料法):灵敏度更高,可用于低浓度样本
核酸检测需通过 A260/A280 比值和 A260/A230 比值来评估纯度。
A260/A280 在 1.8–2.0 之间表示核酸较纯净。
A260/A230 在 2.0–2.2 之间表示基本无有机物或盐类残留。
蛋白质检测时,缓冲液中不应含有在 280 nm 处有强吸收的成分。
任何沉淀或悬浮颗粒都会影响结果,应先进行离心或过滤。
常用溶剂包括去离子水、TE 缓冲液、PBS、Tris 缓冲液等。
溶剂必须与实验体系匹配,并作为“空白”参比。
样本应无明显黏稠感,过高浓度的 DNA 溶液需稀释。
样品应避免蛋白质、酚或盐污染,否则 A260/A280 和 A260/A230 比值会异常。
检测前轻轻混匀,避免部分沉淀。
RNA 样品需避免降解,操作时应使用 RNase-free 器材。
RNA 质量可通过 A260/A280 比值初步判断,理想值约为 2.0。
若需进一步确认完整性,应结合凝胶电泳或生物分析仪检测。
合成的寡核苷酸需溶解均匀,避免局部沉淀。
在核酸定量中,ε(摩尔消光系数)需输入正确,以保证计算准确。
适用于含有色氨酸、酪氨酸残基的蛋白。
要求样品缓冲液在 280 nm 处无强吸收背景。
高盐或表面活性剂会干扰测定,应避免使用。
常见有 Bradford 法、BCA 法。
适用于低浓度或无芳香族氨基酸残基的蛋白。
需要绘制标准曲线,确保定量准确。
核酸浓度过低可能导致扩增失败,应确保 DNA 在 10 ng/µL 以上。
质粒 DNA 检测应排除 RNA 污染。
RNA 样品必须高纯度,A260/A280 在 2.0 左右。
RNA 应避免反复冻融。
样本缓冲液中避免含 SDS、Tris 等强吸收物质。
对低浓度样本,优先选择染料法。
样品来源复杂,必须进行预处理以去除杂质。
高盐或有机溶剂会显著影响检测结果,应进行稀释或纯化。
吸光度异常偏高
可能原因:比对液与样本溶剂不一致。
避免方法:始终使用相同缓冲液作为空白。
结果重复性差
可能原因:样品未混匀,取样不均。
避免方法:检测前充分混匀,避免产生气泡。
A260/A280 比值偏离
可能原因:蛋白质或酚类污染。
避免方法:重复提取或进一步纯化核酸。
无读数或读数过低
可能原因:样本浓度过低或体积不足。
避免方法:提高样本浓度或检查移液准确性。
样本记录:所有检测样本需建立记录,包括浓度、体积、保存条件。
分批检测:对于大批量样品,应统一条件,避免批间差异。
仪器清洁:检测结束后用去离子水清洗检测平台,避免残留污染。
人员培训:操作人员必须熟悉 NanoDrop Eight 的基本原理和样本要求。
赛默飞 NanoDrop Eight 分光光度计以其高通量、低样本消耗和高精度的特点,已成为现代分子生物学和生物化学实验室的重要工具。为了获得可靠的实验结果,必须严格遵循样本体积、浓度、纯度和缓冲液的要求,同时根据不同实验场景调整样本制备方法。通过掌握这些样本要求,研究者不仅可以提升实验效率,还能显著提高数据的准确性和重复性。
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